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甩尾測試儀(甩尾儀)

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準(zhǔn)確測量大鼠或小鼠的尾巴對紅外熱刺激的痛覺閾值,具有極高的可重復(fù)性,對于麻醉動(dòng)物同樣適用。
公眾號
產(chǎn)品詳情

準(zhǔn)確測量大鼠或小鼠的尾巴對紅外熱刺激的痛覺閾值,具有極高的可重復(fù)性,對于麻醉動(dòng)物同樣適用。

疼痛甩尾法起源于D'Amour&Smith 1941年的發(fā)現(xiàn),通過持續(xù)聚焦光束在動(dòng)物尾巴上造成熱刺激,當(dāng)動(dòng)物感到疼痛時(shí),會(huì)出現(xiàn)典型的尾巴突然抽動(dòng)現(xiàn)象,且具有很高的重復(fù)性。


Ugo Basile甩尾測試儀可準(zhǔn)確測量大小鼠尾部對紅外熱刺激的傷害感受敏感性。通過測量對紅外熱輻射的疼痛反應(yīng)時(shí)間長短差異進(jìn)行快速篩選鎮(zhèn)痛藥物。標(biāo)配型號用于大鼠,不包含固定桶,可選小鼠固定筒用于小鼠甩尾測試。

甩尾測試儀主要由一個(gè)紅外光輻射源,鼠固定筒、控制主機(jī)構(gòu)成,將鼠尾巴放置于紅外光發(fā)射窗口處,設(shè)定好光強(qiáng)后,紅外光通過凸透鏡聚焦在鼠尾上。當(dāng)老鼠感到疼痛并擺動(dòng)尾巴時(shí),傳感器會(huì)檢測到終點(diǎn)事件,停止計(jì)時(shí)并自動(dòng)記錄時(shí)長。



優(yōu)勢特點(diǎn):

一、中樞神經(jīng)鎮(zhèn)痛藥物篩選的經(jīng)典設(shè)備

中樞神經(jīng)疼痛常涉及脊柱生物化學(xué)變化,疼痛部位常擴(kuò)展到身體多部位,甩尾測試儀可對中樞神經(jīng)疼痛鎮(zhèn)痛藥物進(jìn)行快速篩選,在已發(fā)表的SCI論文中引用Ugo Basile 甩尾測試儀已超過3000次,是全球使用和驗(yàn)

證最多的疼痛甩尾設(shè)備。

二、測試結(jié)果真實(shí)性高,鼠尾熱痛絕佳測試方案

Ugo Basile甩尾測試儀以D'Amour & Smith方法為設(shè)計(jì)理念,結(jié)合了點(diǎn)刺激和熱刺激的優(yōu)勢,具有對敏感的鼠尾部位不產(chǎn)生交互行為的特點(diǎn),消除了動(dòng)物應(yīng)激反應(yīng),降低了假陽性反應(yīng)的甩尾現(xiàn)象,保證測試結(jié)

果的真實(shí)性和可重復(fù)性。

三、紅外刺激光強(qiáng)可調(diào),自動(dòng)或手動(dòng)評分

紅外刺激光強(qiáng)可設(shè)置范圍為:1%-100%,適用不同動(dòng)物模型。設(shè)備可自動(dòng)檢測并存儲(chǔ)由疼痛引起的甩尾時(shí)間,也可采用腳踏開關(guān)手動(dòng)停止計(jì)時(shí),常用于甩尾難以自動(dòng)測量的情況。

四、可視化觸摸屏控制和直觀的結(jié)果顯示

4.3"觸屏控制,具有廣泛的參數(shù)設(shè)置范圍、用戶友好的觸屏控制模式和直觀的結(jié)果顯示,測試結(jié)果實(shí)時(shí)存儲(chǔ)并可于屏幕上直觀查閱,也可通過U盤一鍵導(dǎo)出電子表格方便保存和數(shù)據(jù)處理。



         


應(yīng)用領(lǐng)域:

甩尾測試儀可以準(zhǔn)確測量大小鼠尾巴對紅外熱刺激的疼痛閾值,廣泛應(yīng)用于疼痛炎癥相關(guān)機(jī)制研究,各類中樞神經(jīng)痛及外周神經(jīng)痛的藥物鎮(zhèn)痛效果評價(jià)。


      


型號規(guī)格:

37560

甩尾測試儀大鼠完整套裝,包含主機(jī)、腳踏開關(guān)、U盤。

37360-325

小鼠固定筒,內(nèi)徑25mm(選配)

37360-330

小鼠固定筒,內(nèi)徑30mm(選配)

37300

紅外光測量儀校準(zhǔn)計(jì)(選配)



參考文獻(xiàn):

1.Guida F, Boccella S, Belardo C, et al. Altered gut microbiota and endocannabinoid system tone in vitamin D deficiency-mediated chronic pain. Brain Behav Immun. 2020;85:128-141. doi:10.1016/j.bbi.2019.04.006

2.Xue N, Wu X, Wu L, Li L, Wang F. Antinociceptive and anti-inflammatory effect of Naringenin in different nociceptive and inflammatory mice models. Life Sci. 2019;217:148-154. doi:10.1016/j.lfs.2018.11.013

3.Hu ZJ, Han W, Cao CQ, Mao-Ying QL, Mi WL, Wang YQ. Peripheral Leptin Signaling Mediates Formalin-Induced Nociception. Neurosci Bull. 2018;34(2):321-329. doi:10.1007/s12264-017-0194-2

4.Pieretti S, Saviano A, Mollica A, Stefanucci A, Aloisi AM, Nicoletti M. Calceolarioside A, a Phenylpropanoid Glycoside from Calceolaria spp., Displays Antinociceptive and Anti-Inflammatory Properties. Molecules. 2022;27(7):2183. Published 2022 Mar 28. doi:10.3390/molecules27072183

5.Marabese I, Boccella S, Iannotta M, et al. Metabotropic glutamate receptor subtype 7 in the dorsal striatum oppositely modulates pain in sham and neuropathic rats. Neuropharmacology. 2018;135:86-99. doi:10.1016/j.neuropharm.2018.03.003

6.Kim ST, Kyung EJ, Suh JS, et al. Phosphatidylcholine attenuated docetaxel-induced peripheral neurotoxicity in rats. Drug Chem Toxicol. 2018;41(4):476-485. doi:10.1080/01480545.2017.1390580

7.Huang F, Chen X, Jiang X, et al. Betaine ameliorates prenatal valproic-acid-induced autism-like behavioral abnormalities in mice by promoting homocysteine metabolism. Psychiatry Clin Neurosci. 2019;73(6):317-322. doi:10.1111/pcn.12833

8.Suzuki T, Sawada T, Kawai K, Ishihara Y. Pharmacological profile of TAN-452, a novel peripherally acting opioid receptor antagonist for the treatment of opioid-induced bowel syndromes. Life Sci. 2018;215:246-252. doi:10.1016/j.lfs.2018.07.028

9.Gias ZT, Afsana F, Debnath P, et al. A mechanistic approach to HPLC analysis, antinociceptive, anti-inflammatory and postoperative analgesic activities of panch phoron in mice. BMC Complement Med Ther. 2020;20(1):102. Published 2020 Mar 30. doi:10.1186/s12906-020-02891-x

10.Palazzo E, Boccella S, Marabese I, et al. Homo-AMPA in the periaqueductal grey modulates pain and rostral ventromedial medulla activity in diabetic neuropathic mice. Neuropharmacology. 2022;212:109047. doi:10.1016/j.neuropharm.2022.109047



甩尾測試儀(甩尾儀)
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021-35183767
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產(chǎn)品詳情

準(zhǔn)確測量大鼠或小鼠的尾巴對紅外熱刺激的痛覺閾值,具有極高的可重復(fù)性,對于麻醉動(dòng)物同樣適用。

疼痛甩尾法起源于D'Amour&Smith 1941年的發(fā)現(xiàn),通過持續(xù)聚焦光束在動(dòng)物尾巴上造成熱刺激,當(dāng)動(dòng)物感到疼痛時(shí),會(huì)出現(xiàn)典型的尾巴突然抽動(dòng)現(xiàn)象,且具有很高的重復(fù)性。


Ugo Basile甩尾測試儀可準(zhǔn)確測量大小鼠尾部對紅外熱刺激的傷害感受敏感性。通過測量對紅外熱輻射的疼痛反應(yīng)時(shí)間長短差異進(jìn)行快速篩選鎮(zhèn)痛藥物。標(biāo)配型號用于大鼠,不包含固定桶,可選小鼠固定筒用于小鼠甩尾測試。

甩尾測試儀主要由一個(gè)紅外光輻射源,鼠固定筒、控制主機(jī)構(gòu)成,將鼠尾巴放置于紅外光發(fā)射窗口處,設(shè)定好光強(qiáng)后,紅外光通過凸透鏡聚焦在鼠尾上。當(dāng)老鼠感到疼痛并擺動(dòng)尾巴時(shí),傳感器會(huì)檢測到終點(diǎn)事件,停止計(jì)時(shí)并自動(dòng)記錄時(shí)長。



優(yōu)勢特點(diǎn):

一、中樞神經(jīng)鎮(zhèn)痛藥物篩選的經(jīng)典設(shè)備

中樞神經(jīng)疼痛常涉及脊柱生物化學(xué)變化,疼痛部位常擴(kuò)展到身體多部位,甩尾測試儀可對中樞神經(jīng)疼痛鎮(zhèn)痛藥物進(jìn)行快速篩選,在已發(fā)表的SCI論文中引用Ugo Basile 甩尾測試儀已超過3000次,是全球使用和驗(yàn)

證最多的疼痛甩尾設(shè)備。

二、測試結(jié)果真實(shí)性高,鼠尾熱痛絕佳測試方案

Ugo Basile甩尾測試儀以D'Amour & Smith方法為設(shè)計(jì)理念,結(jié)合了點(diǎn)刺激和熱刺激的優(yōu)勢,具有對敏感的鼠尾部位不產(chǎn)生交互行為的特點(diǎn),消除了動(dòng)物應(yīng)激反應(yīng),降低了假陽性反應(yīng)的甩尾現(xiàn)象,保證測試結(jié)

果的真實(shí)性和可重復(fù)性。

三、紅外刺激光強(qiáng)可調(diào),自動(dòng)或手動(dòng)評分

紅外刺激光強(qiáng)可設(shè)置范圍為:1%-100%,適用不同動(dòng)物模型。設(shè)備可自動(dòng)檢測并存儲(chǔ)由疼痛引起的甩尾時(shí)間,也可采用腳踏開關(guān)手動(dòng)停止計(jì)時(shí),常用于甩尾難以自動(dòng)測量的情況。

四、可視化觸摸屏控制和直觀的結(jié)果顯示

4.3"觸屏控制,具有廣泛的參數(shù)設(shè)置范圍、用戶友好的觸屏控制模式和直觀的結(jié)果顯示,測試結(jié)果實(shí)時(shí)存儲(chǔ)并可于屏幕上直觀查閱,也可通過U盤一鍵導(dǎo)出電子表格方便保存和數(shù)據(jù)處理。



         


應(yīng)用領(lǐng)域:

甩尾測試儀可以準(zhǔn)確測量大小鼠尾巴對紅外熱刺激的疼痛閾值,廣泛應(yīng)用于疼痛炎癥相關(guān)機(jī)制研究,各類中樞神經(jīng)痛及外周神經(jīng)痛的藥物鎮(zhèn)痛效果評價(jià)。


      


型號規(guī)格:

37560

甩尾測試儀大鼠完整套裝,包含主機(jī)、腳踏開關(guān)、U盤。

37360-325

小鼠固定筒,內(nèi)徑25mm(選配)

37360-330

小鼠固定筒,內(nèi)徑30mm(選配)

37300

紅外光測量儀校準(zhǔn)計(jì)(選配)



參考文獻(xiàn):

1.Guida F, Boccella S, Belardo C, et al. Altered gut microbiota and endocannabinoid system tone in vitamin D deficiency-mediated chronic pain. Brain Behav Immun. 2020;85:128-141. doi:10.1016/j.bbi.2019.04.006

2.Xue N, Wu X, Wu L, Li L, Wang F. Antinociceptive and anti-inflammatory effect of Naringenin in different nociceptive and inflammatory mice models. Life Sci. 2019;217:148-154. doi:10.1016/j.lfs.2018.11.013

3.Hu ZJ, Han W, Cao CQ, Mao-Ying QL, Mi WL, Wang YQ. Peripheral Leptin Signaling Mediates Formalin-Induced Nociception. Neurosci Bull. 2018;34(2):321-329. doi:10.1007/s12264-017-0194-2

4.Pieretti S, Saviano A, Mollica A, Stefanucci A, Aloisi AM, Nicoletti M. Calceolarioside A, a Phenylpropanoid Glycoside from Calceolaria spp., Displays Antinociceptive and Anti-Inflammatory Properties. Molecules. 2022;27(7):2183. Published 2022 Mar 28. doi:10.3390/molecules27072183

5.Marabese I, Boccella S, Iannotta M, et al. Metabotropic glutamate receptor subtype 7 in the dorsal striatum oppositely modulates pain in sham and neuropathic rats. Neuropharmacology. 2018;135:86-99. doi:10.1016/j.neuropharm.2018.03.003

6.Kim ST, Kyung EJ, Suh JS, et al. Phosphatidylcholine attenuated docetaxel-induced peripheral neurotoxicity in rats. Drug Chem Toxicol. 2018;41(4):476-485. doi:10.1080/01480545.2017.1390580

7.Huang F, Chen X, Jiang X, et al. Betaine ameliorates prenatal valproic-acid-induced autism-like behavioral abnormalities in mice by promoting homocysteine metabolism. Psychiatry Clin Neurosci. 2019;73(6):317-322. doi:10.1111/pcn.12833

8.Suzuki T, Sawada T, Kawai K, Ishihara Y. Pharmacological profile of TAN-452, a novel peripherally acting opioid receptor antagonist for the treatment of opioid-induced bowel syndromes. Life Sci. 2018;215:246-252. doi:10.1016/j.lfs.2018.07.028

9.Gias ZT, Afsana F, Debnath P, et al. A mechanistic approach to HPLC analysis, antinociceptive, anti-inflammatory and postoperative analgesic activities of panch phoron in mice. BMC Complement Med Ther. 2020;20(1):102. Published 2020 Mar 30. doi:10.1186/s12906-020-02891-x

10.Palazzo E, Boccella S, Marabese I, et al. Homo-AMPA in the periaqueductal grey modulates pain and rostral ventromedial medulla activity in diabetic neuropathic mice. Neuropharmacology. 2022;212:109047. doi:10.1016/j.neuropharm.2022.109047



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